從18世紀路易吉·伽伐尼（Luigi Galvani）的開(kāi)創(chuàng )性工作開(kāi)始，到19世紀埃米爾·杜布瓦-雷蒙德（Emil du Bois-Reymond）、約翰內斯·彼得·穆勒（Johannes Peter Müller）和赫爾曼·馮·亥姆霍茲（Hermann von Helmholtz）的工作，質(zhì)膜和細胞的興奮性一直是神經(jīng)系統研究的主要興趣^[1]。艾倫·勞埃德·霍奇金（Alan Lloyd Hodgkin）和安德魯·赫胥黎（Andrew Huxley）在1952年使用電壓鉗技術(shù)揭示了動(dòng)作電位的離子通道事件，并于1963年因其杰出的工作而獲得諾貝爾生理學(xué)和醫學(xué)獎^[2,3]。

那時(shí)，電壓鉗僅能用于相當大的細胞，因為需要鋒利的微電極來(lái)穿透質(zhì)膜。在1970年代末，貝爾特·薩克曼（Bert Sakmann）和埃爾文·內爾（Erwin Neher）改進(jìn)了電壓鉗技術(shù)，并且shouci解析了青蛙骨骼肌膜片上的單離子通道電流。他們因此榮膺1991年諾貝爾生理學(xué)和醫學(xué)獎^[4,5]。下一個(gè)突破則是貝爾特·薩克曼（Bert Sakmann）在1980年發(fā)明的高阻封接，極大地提高了信噪比，并允許記錄更小的電流^[6]。

電生理學(xué)，最初誕生在特殊的生物物理實(shí)驗室，現在已經(jīng)擴展到基礎生物學(xué)和醫學(xué)研究領(lǐng)域，并成為研究神經(jīng)系統中單個(gè)細胞或整個(gè)細胞網(wǎng)絡(luò )行為的最重要工具之一。

膜片鉗技術(shù)可以研究若干，甚至單個(gè)離子通道^[7]。因此，它引起了興奮類(lèi)細胞研究工作的極大興趣，例如神經(jīng)元、心肌細胞和肌纖維。^[8]

單個(gè)離子通道每秒可以傳導約1000萬(wàn)個(gè)離子。不過(guò)，電流僅有幾皮安。記錄這種數量級的電流不僅對研究人員，對于設備而言同樣ji具挑戰。原理是將帶有鈍端的薄玻璃或石英管密封在膜上（參見(jiàn)圖1、2和3）。

施加吸力可以產(chǎn)生千兆歐姆級別的高阻抗封接。這種緊密封接可以對膜片進(jìn)行電隔離，這意味著(zhù)流過(guò)膜片的所有離子都會(huì )流入微電極，并借助連接到高靈敏度電子放大器的氯化銀線(xiàn)電極（(Ag/AgCl)電極）記錄。浴電極用于設置零電平。

為了防止細胞膜電位發(fā)生變化，放大器會(huì )產(chǎn)生類(lèi)似于流經(jīng)細胞膜電流的補償電流，作為負反饋機制（參見(jiàn)圖1）。

測量細胞的膜電位并將其與指令電位進(jìn)行比較。如果指令電位和測量值之間存在差異，則會(huì )注入電流。該補償電流將記錄下來(lái)，并可以得出有關(guān)膜電導的結論。膜電位可以獨立于離子電流進(jìn)行操縱，這種能力可以研究膜通道的電流-電壓關(guān)系。

根據研究對象，可以使用不同的配置。在細胞貼附模式下，膜片保持完整（參見(jiàn)圖3）。松散貼片是細胞貼附模式的修改版。這種情況下，移液器沒(méi)有緊密封接在細胞膜上，而是松散地貼附在細胞膜上。該模式通常用于記錄神經(jīng)元細胞中的動(dòng)作電位。它的優(yōu)點(diǎn)在于細胞質(zhì)的成分不受影響。不過(guò)，另一方面，細胞內環(huán)境無(wú)法控制。

通過(guò)電極微管施加造孔劑（通常為抗生素）會(huì )產(chǎn)生穿孔膜片來(lái)保證離子連續性，同時(shí)細胞內蛋白質(zhì)不會(huì )被電極液洗掉。zui常用的膜片鉗模式是全細胞模式（參見(jiàn)圖3）。要實(shí)現這種模式，通過(guò)短暫施加強吸力來(lái)破壞膜片。微電極內部與細胞質(zhì)連為一體。該方法用于記錄來(lái)自整個(gè)細胞的電位和電流。對于全細胞測量方式，研究人員有兩種配置方式可供選擇：電壓鉗模式，其中電壓保持恒定并記錄電流，或者電流鉗模式，其中電流保持恒定并觀(guān)察膜電位的變化。

此外，也可以?xún)H記錄來(lái)自小塊而不是整個(gè)細胞的電流。這增加記錄單個(gè)離子通道的機會(huì )。膜片可以根據微電極內部的兩個(gè)不同方向確定方位。為實(shí)現內面向外的配置，微電極貼附在細胞膜上，并且可以收回以撕下一小片膜（圖3）。本例中，細胞膜的胞質(zhì)表面暴露在外面。這種方法通常用于研究單個(gè)通道的活性，優(yōu)點(diǎn)在于可以調整暴露在細胞內表面的培養基。

如果希望研究細胞外誘因（如神經(jīng)遞質(zhì)）的影響，則應選擇外面向外的配置（參見(jiàn)圖3）。這種情況下，移液器在全細胞測量配置中收回，導致細胞膜破裂并重組。在該配置中，細胞外表面暴露，因此可以輕松應用細胞外誘因。

膜片鉗實(shí)驗適用于培養細胞、急性解離細胞或者急性振動(dòng)切片，從而研究細胞在其自然環(huán)境中的電生理學(xué)特性。感興趣的離子通道也可以在通用細胞系（HEK293、CHO、LNCaP）中分離并異質(zhì)表達。

根據樣品不同，需要使用倒置（培養細胞）或者具有穩定平臺的正置固定載物臺顯微鏡（切片樣品）。如果要研究急性切片中的細胞，建議使用紅外DIC（微分干涉對比）顯微鏡^[9]，后者可以更加方便地觀(guān)察細胞膜。顯微鏡應放置在防振臺上，因為任何移動(dòng)都可能對微電極和細胞膜之間的封接造成致命影響。

需要使用顯微操作臂來(lái)精確移動(dòng)微電極。加熱并拉長(cháng)小型玻璃或石英毛細管可以形成極細的微電極管。電極管吸頭的直徑約為1微米，其中包含的膜片僅含幾個(gè)（甚至一個(gè)）離子通道。微電極管吸頭需要在熔融狀態(tài)進(jìn)行熱拋光，以便在吸頭接觸到細胞膜后實(shí)現高阻抗封接。電極管中含有類(lèi)似于胞外溶液或細胞質(zhì)的溶液，具體取決于記錄模式。微電極安裝在顯微操作臂上，可以向細胞膜精準移動(dòng)。

為了檢測電流，使用了氯化銀線(xiàn)。同樣采用氯化銀線(xiàn)（作為銀/氯化銀電極）的浴電極設置為零電流值。帶低噪聲晶體管的差分放大器連接到計算機，以進(jìn)行數據采集和數字化，可以采購特定軟件來(lái)控制該放大器并分析數據?；蛘?，可以使用示波器來(lái)監測電流。如有需要，可以為該配置添加灌注系統。特定物質(zhì)可以通過(guò)灌注筆或使用POC（灌注開(kāi)關(guān)）室添加。